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幾種常用轉(zhuǎn)化細(xì)胞的轉(zhuǎn)化

更新時(shí)間:2010-03-15  |  點(diǎn)擊率:2269
幾種常用轉(zhuǎn)化細(xì)胞和轉(zhuǎn)化技術(shù)



 

1)致癌化學(xué)物轉(zhuǎn)化細(xì)胞:轉(zhuǎn)化敘利亞地鼠胚胎細(xì)胞實(shí)驗(yàn)
1.取材:妊娠后第13天取材,取數(shù)個(gè)同窩胚胎,去頭和內(nèi)臟,在無菌條件下剪碎至米粒大小,再用0.25%胰蛋白酶(含0.01%EDTA)37℃消化30分鐘,濾過、低速離心、吸除消化液、加入營養(yǎng)液、制備成細(xì)胞懸液、接種入75cm/培養(yǎng)瓶中,接種密度10~20×106/75cm,37℃培養(yǎng)2~3天,在順利情況下能迅速長滿瓶面。
2.貯存:選大批生長狀態(tài)良好的細(xì)胞凍存,儲以備用。
3.致癌物處理:取凍存細(xì)胞,解凍,接種于25ml培養(yǎng)瓶中,每瓶含細(xì)胞10萬~30萬。待細(xì)胞生長進(jìn)入指數(shù)增生期時(shí),向培養(yǎng)瓶中加入致癌劑MNNG。致癌劑量1~3微克/毫升營養(yǎng)液。在37℃溫箱中培養(yǎng)12~48小時(shí)。
4.低血清培養(yǎng):棄掉MNNG作用液,用溫PBS洗1~3次,加入含20%小牛血清,繼續(xù)置溫箱中培養(yǎng)2~3周,然后改用含5%血清培養(yǎng)液培養(yǎng)。低血清培養(yǎng)液不利于正常細(xì)胞生長,但已轉(zhuǎn)化的細(xì)胞仍能增殖和形成轉(zhuǎn)化灶。
5.轉(zhuǎn)化灶形成和分離:在成功情況下,用致癌物處理過的細(xì)胞于10天后在正常細(xì)胞之間,可產(chǎn)生數(shù)量不等的轉(zhuǎn)化灶。

2)病毒轉(zhuǎn)化細(xì)胞
1.血液制備:檸檬酸(Citric Acide)或肝素抗凝取血1~2ml,分裝入管中,每管0.5ml全血,置于4℃冰箱中30分鐘。
2.EBV病毒轉(zhuǎn)化:從液氮中取出凍存的0.5ml全血,在37℃水中迅速解凍。
3.將解凍細(xì)胞與10ml不含血清的RPMI 1640混合,2500 rpm離心2分鐘,棄上清,用含20%的胎牛血清、青、鏈霉素和慶大霉素的RPMI 1640生長培養(yǎng)基重懸細(xì)胞。
4.加入0.3~0.5ml的EBV病毒液,37℃水浴30分鐘~2小時(shí),并不時(shí)搖動,以免出現(xiàn)凝塊。
5.分裝入50ml的培養(yǎng)瓶中,同時(shí)補(bǔ)加適量培養(yǎng)液,置入含5%CO2溫箱中,100%溫度下培養(yǎng)。
6.一周后加補(bǔ)入2ml培養(yǎng)基。
7.經(jīng)常鏡檢培養(yǎng)物,每3~4天加液或換液,隨細(xì)胞數(shù)量增多,可分裝入大瓶中培養(yǎng)。

3)  癌基因轉(zhuǎn)化細(xì)胞:基因組DNA轉(zhuǎn)染法
1.提取基因DNA(含癌基因)。
2.DNA準(zhǔn)備:取供體DNA50~100微克,加3M NaCl或醋酸鈉使終濃度至0.3M混勻。
3.再加2倍體積無水乙醇,3000轉(zhuǎn)/分離心10分鐘,去上清。
4.加入轉(zhuǎn)染緩沖液,待DNA充分融解后,再加入2.5M CaCl2,令終濃度為125mM,用吸管輕輕吹打三次。置室溫下10~30分鐘,待液體透明度降低,出現(xiàn)微濁藍(lán)色時(shí),即可用于轉(zhuǎn)染受體細(xì)胞。
5.細(xì)胞:取生長狀態(tài)良好、處于半?yún)R合階段的指數(shù)增生期細(xì)胞,在轉(zhuǎn)染前24小時(shí),更換培養(yǎng)液1次。
6.轉(zhuǎn)染:向每瓶中加DNA-磷酸鈣沉淀物0.5~1ml/瓶,置37℃作用4~6小時(shí)。
7.培養(yǎng):棄去培養(yǎng)液,用15%甘油處理3分鐘,無血清培養(yǎng)漂洗1次,加入新培養(yǎng)液,37℃溫箱培養(yǎng)24小時(shí)。
8.傳代:按1:5或1:10分瓶傳代,每2~3天換液1次,接近匯合時(shí)血清用量降至5%,培養(yǎng)2~3周。
9.檢測:逐日觀察,待出現(xiàn)轉(zhuǎn)化灶后,分離入另瓶中培養(yǎng)。
 

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